Офтальмология. Специальные методы исследования у животных

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ 

ДЕПАРТАМЕНТ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ 

ПОЛИТИКИ И РЫБОХОЗЯЙСТВЕННОГО КОМПЛЕКСА 

САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ  

УНИВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

 

 

 

 

 

 

ОФТАЛЬМОЛОГИЯ 

СПЕЦИАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ  

ИССЛЕДОВАНИЯ У ЖИВОТНЫХ 

 

 

Методические указания 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Санкт-Петербург 

2021 

УДК 617.7:619(075.8) 
ББК 48.755.8я73 

 

Авторы: 

Прудникова Е.В. кандидат ветеринарный наук, ассистент кафедры общей 

и частной хирургии 

Стекольников А.А. профессор, доктор ветеринарных наук, академик РАН 
Нарусбаева М.А. кандидат ветеринарный наук, доцент кафедры общей и 

частной хирургии 

Титова Е.В. ассистент кафедры общей и частной хирургии 

 

Рецензенты: 

Ковалев С.П. – профессор, доктор ветеринарных наук 

 
 

Офтальмология. Специальные методы исследования у животных : 

методические указания / Е. В. Прудникова, А. А. Стекольников,  
М. А. Нарусбаева, Е. В. Титова ; МСХ РФ, СПбГУВМ. – Санкт-
Петербург: Изд-во СПбГУВМ, 2021. – 31 с. 
 
 

В методических указаниях представлен обзор современных специаль-

ных методов исследований, применяемых в ветеринарной офтальмологии, 
показания и противопоказания к проведению тестов, техника их выполнения, 
особенности интерпретации полученных результатов. Также в методическом 
пособии представлено обширное приложение с фотоматериалами, 
наглядно демонстрирующими описанные методы исследований. 

Пособие предназначено для методических указаний для обучающихся 

факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВО СПбГУВМ по специальности 
36.05.01 Ветеринария, по дисциплине «Офтальмология» очной, очно-
заочной и заочной форм обучения. 

. 
 
 

Рекомендовано для издания методическим советом ФГБОУ ВО СПбГУВМ 

Протокол № 8 от 15.11.21г. 
                            
 
 
 

                        © ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2021 

ВВЕДЕНИЕ 

 

Методы исследования в ветеринарной офтальмологии играют 

важнейшую роль в постановке верного диагноза и, соответственно, 
назначении оптимального лечения, сохраняющего структуры и 
функции глазного яблока и его придаточного аппарата. Владение 
техникой проведения различных исследований, понимание целесообразности 
проведения и диагностической ценности каждого 
вида исследований – неотъемлемая часть знаний ветеринарного 
офтальмолога. В методических указаниях представлен обзор современных 
специальных методов исследований, применяемых в 
ветеринарной офтальмологии, показания и противопоказания к 
проведению тестов, техника их выполнения, особенности интерпретации 
полученных результатов. Также в методическом пособии 
представлено обширное приложение с фотоматериалами, наглядно 
демонстрирующими описанные методы исследований. 

 
 

 
 

1. ИССЛЕДОВАНИЕ СЛЕЗНОЙ ПЛЕНКИ 

 

1.1. Тест Ширмера 1 – отражает количественный параметр водного 

слоя слезной пленки. Оценивает и базальную, и рефлекторную слезопро-
дукцию. 

Тест Ширмера 1 обязательно проводить всем собакам с признаками ке-

ратита, конъюнктивита, гнойными выделениями из конъюнктивального 
мешка [8,18, 27]. Тест Ширмера 1 регулярно повторяют для динамического 
наблюдения за пациентами на фоне лечения сухого кератоконъюнктивита.  

Проводится до внесения в конъюнктивальный мешок каких-либо ка-

пель, взятия соскобов, мазков. 

Стерильную полоску теста Ширмера, градуированную в миллиметрах 

помещают одним концом за нижнее веко животного в средней или височной 
части нижнего века на 60 секунд (фото 1). В норме у собак значение теста 
Ширмера составляет 15 и более мм/мин [24, 27]. Значения ниже 15 мм могут 
быть расценены как количественный сухой кератоконъюнктивит, особенно 
при наличии других характерных признаков (гнойные выделения из конъ-
юнктивального мешка, гиперемия конъюнктивы, блефароспазм, сосудистый 
кератит – фото 2). Значение теста Ширмера у здоровых кошек варьирует от 
9-34 мм/мин [23].  

1.2. Тест Ширмера 2 
Оценивает только базальную слезопродукцию. 
Проводится аналогично с тестом Ширмера 1, но перед внесением по-

лоски в конъюнктивальный мешок вносят каплю местного анестетика и высушивают 
нижний конъюнктивальный свод ватной палочкой. Такая подготовка 
обеспечивает устранение рефлекторного компонента слезопродукции 
за счет обезболивания роговицы и конъюнктивы. Нормативные значения теста 
Ширмера 2 обычно примерно в 2 раза ниже значений теста Ширмера 1. 
Тест Ширмера 2 редко используется в клинической практике [18]. 

1.3. Тест с фенольной нитью 
Отражает количественный параметр водного компонента слезной плен-

ки, проводится до внесения в конъюнктивальный мешок капель, растворов, 
взятия соскобов с роговицы и конъюнктивы. И также как тест Ширмера 2 
измеряет базальную слезопродукцию. 

Кусочек хлопчатобумажной нити, предварительно пропитанной фе-

нолротом и высушенной, помещают за край нижнего века на 15 секунд. За 
счет пропитывания слезой цвет нити меняется с желтого на красный (слеза 
имеет слабощелочную рН, которая вызывает изменение цвета индикатора), 
длину окрашенного участка измеряют в миллиметрах. Нормальное значение 
для собак 34 мм/15 сек, для кошек 29 мм/15 сек [18, 23, 27]. Преимуществом 

теста с фенольной нитью является малый размер нити по сравнению с полоской 
теста Ширмера, что позволяет проводить исследование щенкам, котятам, 
экзотическим видам животных. Также исследование занимает меньше 
времени, чем тест Ширмера. 

1.4. Время разрыва слезной пленки (проба Норна) 
Тест отражает стабильность слезной пленки, то есть при нормальном 

количестве водного и жирового компонента слезы демонстрирует качество 
муцинового компонента. Уменьшение количества или ухудшение качества 
муцина приводит к нестабильности слезной пленки и сокращению времени 
разрыва слезной пленки. 

Для проведения теста на поверхность роговицы капают 1 каплю кон-

центрированного раствора флюоресцеина, глаз животного удерживают закрытым, 
пока не подготовили щелевую лампу с кобальтовым фильтром для 
осмотра поверхности роговицы. Как только врач готов к осмотру, глаз животного 
открывают и удерживают открытым, наблюдая за окрашенной 
флюоресцеином слезной пленкой, а именно за появлением в равномерном 
слое флюоресцеина темных пятен («разрывов»). В норме у собак время от 
начала теста до появления пятен составляет 20 секунд, а у кошек колеблется 
от  9,1 до 17,7 секунд [23].  

Снижение времени разрыва слезной пленки может быть показателем 

качественного сухого кератоконъюнктивита (а не количественного, как тест 
Ширмера).  

2. ИССЛЕДОВАНИЕ ЦЕЛОСТНОСТИ РОГОВИЦЫ  

ПРИ ПОМОЩИ КРАСИТЕЛЕЙ 

 
2.1. Флюоресцеиновый тест  
Тест используется для диагностики нарушений целостности роговицы 

(эрозий и язв, разрывов), сопровождающихся обнажением стромы роговицы. 

Принцип основан на том, что эпителий роговицы и десцеметова мем-

брана гидрофобны и не впитывают водный раствор флюоресцеина, при 
орошении поверхности глаза физраствором флюоресцеиновый краситель 
смывается с них без следа. Строма роговицы гидрофильна и впитывает 
флюоресцеин, окрашиваясь им, при промывании физраствором окрашивание 
сохраняется [6, 8]. 

Флюоресцеин выпускают в форме пропитанных концентрированным 

раствором и высушенных полосок, в индивидуальной стерильной упаковке (
водные растворы флюоресцеина менее предпочтительны, так как 
они легко контаминируются микрофлорой). Для проведения теста потребуется 
извлечь полоску из упаковки, смочить ее окрашенный конец сте-

рильным физраствором, стряхнуть излишек раствора с полоски и затем 
осторожно прикоснуться окрашенным концом полоски к конъюнктиве 
глаза (удобнее это делать в дорсальной части бульбарной конъюнктивы). 
Касания полоской роговицы лучше избегать, так как это может привести 
к формированию ложноположительного окрашивания в зоне касания. 
После распределения флюресцеина по поверхности глаза при моргании 
нужно смыть его при помощи 5-10 мл физраствора, чтобы избежать 
ложноположительного окрашивания при неровностях поверхности роговицы, 
окрашивании комочков слизи и т.д.  

Тест считается положительным, когда на роговице после смывания 

флюоресцеина видно ярко-зеленое окрашивание, более контрастно выглядящее 
при использовании кобальтового фильтра щелевой лампы. 

Есть несколько типичных видов окрашивания для определенных типов 

патологий роговицы. При поверхностных язвах флюоресцеином окрашивается 
только дно язвы, и окрашенная зона имеет четкие границы (фото 3). 
При более глубоких стромальных язвах окрашиваются и стенки, и дно язвы, 
а также флюоресцеин пропитывает прилежащую строму роговицы, поэтому 
границы окрашивания менее четкие (фото 4). При десцеметоцеле окрашивание 
кольцевидное, так как десцеметова мембрана не окрашивается флюо-
ресцеином. При хронических эрозиях (индолентных язвах) флюоресцеином 
окрашивается дно, однако для них характерно наличие «гало» — периферического 
полиморфного участка с менее выраженным окрашиванием, просвечивающего 
через неплотно прилегающий эпителиальный ободок (патогномоничный 
признак хронической эрозии) (фото 5) 

На фоне лечения пациента с патологиями роговицы флюоресцеиновый 

тест повторяют в динамике для оценки изменений площади дефекта и состояния 
его дна.  

2.2. Тест Зейделя 
Этот тест выполняется для выявления негерметичности роговицы при 

сквозных язвах и проникающих ранениях. Для проведения теста прикасаются 
слегка увлажненной стерильной флюоресцеиновой полоской к поверхности 
дефекта и наблюдают за областью дефекта при помощи щелевой лампы 
с кобальтовым синим фильтром. При положительном тесте будет видно разбавление 
концентрированного флюоресцеина истекающей из негерметичного 
дефекта внутриглазной жидкостью (цвет с оранжевого становится зеленым) 
или прозрачные подтеки внутриглазной жидкости на фоне зеленой 
флюоресцеиновой пленки [18, 24].     

2.3. Окрашивание бенгальским розовым и лиссаминовым зеленым 
Бенгальский розовый и лиссаминовый зеленый окрашивают мертвые 

эпителиальные клетки роговицы и конъюнктивы, а также зоны с дефекта-

ми муцинового слоя. Они используются для диагностики поверхностных 
повреждений при сухом кератоконъюнктивите, качественной недостаточности 
слезной пленки или герпесвирусной инфекции, сопровождающейся 
некрозом поверхностных слоев эпителия роговицы и конъюнктивы без 
обнажения подлежащей стромы. Бенгальский розовый и лиссаминовый 
зеленый наносят с помощью пропитанных красителем полосок (аналогичных 
флюоресцеиновым), а после нанесения осматривают роговицу при 
помощи щелевой лампы без кобальтового фильтра (в белом свете). Лис-
саминовый зеленый более предпочтителен, так как он не обладает цито-
токсическим действием на клетки роговицы и конъюнктивы в отличие от 
бенгальского розового [27]. 

3. ИССЛЕДОВАНИЕ СИСТЕМЫ СЛЕЗООТВЕДЕНИЯ 

 
3.1. Тест Джонса 1 
Для оценки пассивной проходимости носослезной системы проводят 

тест Джонса 1 (тест пассажа флюоресцеина). Это исследование требуется 
при эпифоре, признаках дакриоцистита, гнойных выделениях из конъюнк-
тивального мешка. Каплю флюоресцеина вносят в конъюнктивальный мешок, 
при положительном тесте флюоресцеин вскоре появляется в ноздре 
животного (фото 6). У некоторых собак и кошек, особенно брахицефалов, 
возможно стекание флюоресцеина в заднюю часть носовой полости и в рот, 
поэтому для точной оценки нужно осмотреть также и ротовую полость. 
Время, за которое флюоресцеин оказывается в носовой или ротовой полости, 
очень варьирует и составляет у клинически здоровых собак от 35 секунд 
до более чем 30 минут, у кошек от 4 секунд до более чем 30 минут, 
причем у животных-брахицефалов время значительно больше чем у долихоцефалов [
9]. Поэтому иногда во время офтальмологического приема животного 
даже с полноценным носослезным каналом можно столкнуться с отрицательным 
результатом теста Джонса 1. Поэтому дополнительно используют 
тест Джонса 2. 

3.2. Тест Джонса 2 
Для более точной диагностики проходимости носослезной системы 

используют тест на активную проходимость – тест Джонса 2. При этом 
после инстилляции местного анестетика в верхнюю или нижнюю слезную 
точку животного вводят внутривенный катетер без иглы или специальную 
металлическую канюлю, соединенную с шприцем, заполненным 
раствором флюоресцеина, и подают данный раствор под давлением в но-
сослезный канал. Если канал проходим, то раствор быстро выходит из 
соответствующей ноздри, а также из второй слезной точки (что свидетельствует 
о проходимости верхнего и нижнего слезного канальца). От-

сутствие истечения раствора из носа говорит о непроходимости носо-
слезной системы и требует дополнительной диагностики (дакриоцисто-
ринография, КТ головы) [24, 27].  

Для лошадей обычно используют ретроградное промывание через но-

совое отверстие носослезного канала, расположенное на вентромедиальной 
части ноздри недалеко от кожно-слизистого соединения, в эту точку можно 
ввести кошачий уретральный катетер, а вводимый раствор появится из 
конъюнктивального мешка. У кролика есть только 1 слезная точка – нижняя, 
расположенная в медиальной части нижнего века, она смещена вглубь 
конъюнктивального свода, поэтому для ее обнаружения приходится захватить 
пальцами и оттянуть нижнее веко, промывание носослезного канала у 
кролика технически проводят как и кошкам/собакам. 

4. ОТБОР ПРОБ С ПОВЕРХНОСТЕЙ ГЛАЗА  

ДЛЯ ЦИТОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ 

Показаниями к цитологическому исследованию является подозрение на 

паннус и/или плазмому (аутоиммунное поражение роговицы и конъюнктивы, 
наиболее характерное для овчарок), эозинофильный кератит (иммуно-
опосредованное поражение роговицы, характерное для кошек и лошадей), 
осложненные язвы роговицы. 

Перед тем как отбирать материал в конъюнктивальный мешок вносят  

1-2 капли местного анестетика (Алкаин, Инокаин). Ребро ладони руки, 
удерживающей инструмент для отбора проб, опирают о голову пациента 
так, чтобы можно было контролировать расстояние между инструментом и 
глазом пациента и угол наклона инструмента. Все инструменты подносят к 
глазу таким образом, чтобы край был параллелен поверхности ткани, с которой 
проводят отбор пробы.  

При глубоких стромальных язвах материал отбирают очень осторожно, 

не надавливая на само глазное яблоко или веки. Материал отбирают с периферии 
язвы, где роговица более стабильна и толще.  

Пробы роговицы или конъюнктивы отбирают с помощью цитощетки 

(фото 7) или задней части лезвия скальпеля. Цитологические щетки лучше 
переносятся пациентами и потенциально более безопасны. С помощью ватных 
палочек получают относительно немного клеток, которые плохо переносятся 
на стекло, поэтому их использовать не рекомендуется. Для отбора 
проб цитощетку обычно «прокатывают» по соответствующей поверхности, 
тогда как задней частью лезвия скальпеля проводят в одном направлении 
быстрым «скоблящим» движением [18]. Материал, полученный с помощью 
соскоба осторожно прикладывают к чистому предметному стеклу, а материал 
с цитощетки осторожно переносят, прокатывая ее по стеклу. В обоих 

случаях стекло перед окрашиванием высушивают, далее помещают в фиксатор 
и краситель. Примеры клеток, наблюдаемых в цитологических образцах 
с конъюнктивы – фото 8, 9, 10.  

5. ЩЕЛЕВАЯ БИОМИКРОСКОПИЯ 

 
Проводится с использованием портативной ручной щелевой лампы, 

чаще всего бинокулярной, которая представляет из себя окуляры для исследователя (
обеспечивают увеличение 10х, 16х) и источник яркого света, 
ширина пучка которого меняется от круга до узкой вертикальной щели (
минимум 0,2 мм), причем источник света подвижен по полукруглой 
траектории для того, чтобы линия падения света на глаз пациента не 
совпадала с линией направления взгляда исследователя, и свет падал 
справа или слева (фото 11). 

При помощи щелевой лампы проводится осмотр век, конъюнктивы, ро-

говицы, передней камеры глаза, хрусталика и передней части стекловидного 
тела. За счет возможности сформировать узкую световую щель и падения 
света под углом, а также увеличения можно определить расположение помутнений 
в слоях роговицы, передней камере или хрусталике, оценить взаиморасположение 
структур глаза, глубину язвы роговицы [6, 8].  

После настройки диоптрий на окулярах щелевой лампы согласно зрению 

врача, расстояния между окулярами согласно межзрачковому расстоянию врача, 
осветитель щелевой лампы переводится в правое положение для осмотра 
левого глаза, затем – в левое положение для осмотра правого глаза (таким образом 
свет падает в глаз со стороны уха, а не носа животного). Пациента располагают 
в сидячем или стоячем положении, удерживая под подбородок и за 
затылок, чтобы плоскость роговицы была перпендикулярна полу, врач располагает 
не ведущую руку на голове животного, приоткрывая его веки, ведущей 
рукой врач удерживает щелевую лампу. Окуляры щелевой лампы располагают 
вплотную к глазам врача, и подносят щелевую лампу к пациенту на расстояние 
в несколько сантиметров, пока четко не будут видны исследуемые структуры. 
Обследование обычно проводят, начиная с более поверхностных и периферических 
структур и заканчивая более глубокими и центральными. Биомикро-
скопию нужно проводить в затемненном помещении, чтобы избегать бликов, 
двукратно: до и после достижения медикаментозного мидриаза.  

6. ОФТАЛЬМОТОНОМЕТРИЯ 

 
Офтальмотонометрию - измерение внутриглазного давления (ВГД) 

проводят прибором Tonovet или Tonopen, это современные цифровые приборы, 
позволяющие получить точные данные ВГД. Измерение ВГД прово-

дится для обоих глаз, всем животным на каждом приеме, особенно животным 
предрасположенных к глаукоме пород, животным с увеитом, глаукомой 
одного или обоих глаз, после хирургии катаракты или другой интраоку-
лярной хирургии, тонометрию проводят до внесения в конъюнктивальный 
мешок мидриатиков. Нормальные показатели ВГД собак и кошек в среднем 
варьируют от 10 до 20 мм рт.ст. с разницей между глазами не более 3 мм 
рт.ст. [8, 18, 27]. 

Для измерения ВГД прибором Tonovet не требуется местная аналь-

гезия (никакие препараты в конъюнктивальный мешок не используются) 
пациента располагают в положении сидя, голову пациента фиксируют за 
подбородок и затылок в нейтральном физиологическом положении (не 
фиксируют за шею), чтобы плоскость роговицы глаза была перпендикулярна 
полу, веки животного лучше не фиксировать или минимально 
фиксировать в открытом положении (фото 12). Рабочую часть прибора 
(зонд) подносят перпендикулярно к роговице животного на расстояние 
4-5 мм от поверхности роговицы, при нажатии кнопки прибора зонд 
осуществляет касание роговицы, и за счет скорости отскока зонда от роговицы 
прибор вычисляет значение внутриглазного давления. Для получения 
более достоверных данных проводят по 6 последовательных измерений, 
после 6-го измерения прибор автоматически вычисляет среднее 
значение ВГД. Преимущества этого типа тонометра в том, что нет необходимости 
использовать местные анестетики, размер рабочей части мал, 
что позволяет проводить измерения для мелких животных (рептилии, 
грызуны, хорьки, щенки и котята), касание рабочей частью прибора роговицы 
практически не ощутимо животным, этот тонометр калиброван 
для собак, кошек, лошадей и лабораторных животных. 

Тонометрия с использованием тонометра Tonopen требует использова-

ния местного анестетика, после чего рабочей частью прибора, предварительно 
защищенной одноразовым латексным чехлом, прикасаются к поверхности 
роговицы, после 6 последовательных измерений прибор дает 
среднее значение ВГД (фото 13). В данном случае степень надавливания на 
роговицу контролируется врачом, что требует аккуратности специалиста, 
местная анестезия обязательна, а размер рабочей части не позволяет проводить 
исследование для очень мелких животных [11]. 

На точность измерения ВГД может влиять состояние роговицы (су-

хость, шероховатость, изъязвление), поэтому необходимо учитывать 
свойства поверхности при получении неоднозначных результатов, выбирать 
для измерения ровную часть роговицы. В случае обнаружения сквозных 
или очень глубоких язв и травм роговицы стоит обдумать диагностическую 
ценность тонометрии для данного пациента и, возможно, воздержаться 
от измерения ВГД.